超氧化物歧化酶(SOD)测试盒(NBT法)可见分光光度法

商品属性：

测定意义：

SOD（EC 1.15.1.1）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，催化超氧化物阴离子

发生岐化作用，生成 H2O2和 O2。SOD 不仅是超氧化物阴离子清除酶，也是 H2O2主要生成

酶，在生物抗氧化系统中具有重要作用。
测定原理：

通过黄嘌呤及黄嘌呤氧化酶反应系统产生超氧阴离子(O2-)，O2-可还原氮蓝四唑生成蓝色甲臜，后者在 560nm 处有吸收；SOD 可清除 O2-，从而抑制了甲臜的形成；反应液蓝色越深，

说明 SOD 活性愈低，反之活性越高。自备仪器和用品:可见分光光度计、台式离心机、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水
试剂组成和配制：

提取液：液体 60mL×1 瓶，4℃保存；

试剂一：液体 15mL×1 瓶，4℃保存；

试剂二：液体 350μL×1 支，4℃保存；

试剂三：液体 10mL×1 瓶，4℃保存；

试剂四：粉剂×2 瓶，4℃保存。
酶液提取：
1、细菌、细胞或组织样品的制备：
细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量
（104个）：提取液体积（mL）为 500~1000：1 的比例（建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提
取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率 20％或 200W，超声 3s，间隔 10s，重复 30 次）；
8000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。
组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，
加入 1mL 提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。
2、血清（浆）样品：直接检测。

测定操作：
1、 分光光度计预热 30min 以上，调节波长至 560nm，蒸馏水调零。
2、 将试剂二用蒸馏水稀释两倍，用多少配多少。（试剂二和蒸馏水 1：1 稀释）
3、 将一瓶试剂四用 5mL 蒸馏水溶解（溶解后一周内用完），再用蒸馏水稀释 4 倍，用多少
配多少（试剂四和蒸馏水 1：3 稀释）。
4、 测定前将试剂一、三和四在 37℃（哺乳动物）或 25℃（其他物种）水浴 5min 以上。
5、 样本测定（在 EP 管中依次加入下列试剂）：
试剂名称（μL） 测定管 对照管
试剂一 240 240
试剂二 6 6
样本 90
蒸馏水 90
试剂三 180 180
试剂四 510 510
充分混匀，室温静置 30min 后，加入 1mL 玻璃比色皿，560nm 处测定各管吸光值 A。
注意事项：
1、试剂二为酶，不可冷冻，使用时在冰上放置。
2、对照管只需要做一管。
3、若对照管吸光值大于 2，建议将试剂二用蒸馏水稀释 7 倍后使用（10μL 试剂二原液+60μL
蒸馏水）。
4、SOD 为什么有的样本测定管大于对照管，对照管数值在什么范围？
对照管的范围是 0.8-2。对照管吸光值过低可能是（1）试剂二或试剂四没有现配现用；
（2)没有按顺序加试剂；（3）反应时间不够，可以延长反应时间（反应时间 30min 可以延长
到 40min）。对照管吸光值过高可能是试剂二未按操作说明书稀释相应倍数。
若出现测定管大于对照管，可能是样本中杂质的影响太大，为了降低杂质的影响一般
将样本提取上清液用蒸馏水或提取液稀释 10 倍后再测，通常可以使测定正常。计算公式中
乘以相应稀释倍数。

计算公式：
SOD 活性计算：
1、抑制百分率的计算
抑制百分率＝(A 对照管－A 测定管) ÷A 对照管×
尽量使样本的抑制百分率在 10-90%范围内。如果计算出来的抑制百分率小于 10%或大于
90%，则通常需要调整加样量后重新测定。如果测定出来的抑制百分率偏高，则需将样本用
提取液适当稀释；如果测定出来的抑制百分率偏低，则需重新准备浓度比较高的待测样本。
2、SOD 酶活性单位：在上述黄嘌呤氧化酶藕联反应体系中抑制百分率为 50%时，反应体系
中的 SOD 酶活力定义为一个酶活力单位(U/mL)。
3、SOD 酶活性计算：
（1）血清（浆）SOD 活性(U/mL)=[抑制百分率÷(1－抑制百分率)×V 反总]÷V 样
=11.4×抑制百分率÷(1－抑制百分率)
（2）组织、细菌或培养细胞 SOD 活力计算：
a.按样本蛋白浓度计算
SOD 活性(U/mg prot)=[抑制百分率÷(1－抑制百分率)×V 反总]÷(V 样×Cpr)
=11.4×抑制百分率÷(1－抑制百分率)÷Cpr
需要另外测定，建议使用本公司 BCA 蛋白质含量测定试剂盒。
b.按样本鲜重计算
SOD 活性(U/g 鲜重)=[抑制百分率÷(1－抑制百分率)×V 反总]÷(W×V 样÷V 样总)
=11.4×抑制百分率÷(1－抑制百分率)÷W
c.按细菌或细胞个数计算
SOD 活力(U/104 cell)=[抑制百分率÷(1－抑制百分率) ×V 反总]÷(500×V 样÷V 样总)
=0.0228×抑制百分率÷(1－抑制百分率)
V 反总：反应体系总体积，1.026mL；V 样：加入反应体系中样本体积，0.09mL；V 样总：
加入提取液体积，1 mL；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL ；W：样本质量，g；500：细胞或
细菌总数，500 万。

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