胃蛋白酶测试盒微量法

商品属性：

测定意义：

胃蛋白酶由胃粘膜主细胞分泌，分解食物中蛋白质成小肽段。一般用于神经性低酸症的鉴别。
测定原理：

胃蛋白酶可催化血红蛋白水解，水解产物与福林试剂反应后显蓝色；一定范围内，其颜色的 深浅与胃蛋白酶活性呈正比。 自备仪器和用品： 可见分光光度计/酶标仪、微量玻璃比色皿/96 孔板、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、 研钵、冰和蒸馏水。
试剂组成和配制：

试剂一：液体 100mL×1 瓶，4℃保存。
试剂二：液体 20mL×1 瓶，4℃保存。
试剂三：粉剂×1 瓶，4℃避光保存。临用前加入 10mL 试剂二充分溶解。
试剂四：粉剂×1 瓶，4℃保存。临用前加入 10mL 蒸馏水充分溶解。
试剂五：粉剂×1 瓶，4℃保存。临用前加入 15mL 蒸馏水充分溶解。
试剂六：液体 3.3mL×1 瓶，4℃保存。
标准品：液体 1.27mL×1 支，0.5μmol/mL 酪氨酸标准溶液浓度 4℃保存。
提取：
组织样品：按照组织质量（g）：试剂一体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织， 加入 1mL 试剂一）冰浴匀浆，8000g，4℃离心 10min，取上清，即粗酶液。
测定操作：
1.分光光度计/酶标仪预热 30min，调节波长到 580 nm，蒸馏水调零。
2. 试剂三和试剂四置于 37℃水浴预热 30min。
3. 标准管：取微量玻璃比色皿/96 孔板，加入 20μL 标准品，40μL 试剂二，120μL 试剂五，
20μL 试剂六，混匀后室温静置 20min，于 580 nm 测光吸收，记为 A 标准管。
4. 空白管：取微量玻璃比色皿/96 孔板，加入 20μL 蒸馏水，40μL 试剂二，120μL 试剂五，
20μL 试剂六，混匀后室温静置 20min，于 580 nm 测光吸收，记为 A 标准空白管。
5. 对照管：取 EP 管，加入 100 μL 蒸馏水，置于 37℃水浴保温 10min；加入 100μL 试剂
四，盖紧后摇匀 1min；加入 20μL 粗酶液，混匀后 8000g 4℃离心 10 分钟取上清；在微量
玻璃比色皿/96 孔板加入上清液 20μL，再加入 40μL 试剂二，120μL 试剂五，20μL 试剂
六，混匀后室温静置 20min，于 580 nm 测光吸收，记为 A 空白管。
6. 测定管：取 EP 管，加入 20μL 粗酶液，100μL 试剂三，置于 37℃水浴保温 10min；加入
100μL 试剂四，盖紧后摇匀 1min；8000g 4℃离心 10 分钟取上清；在微量玻璃比色皿/96 孔
板加入上清液 20μL，再加入 40μL 试剂二，120μL 试剂五，20μL 试剂六，混匀后室温静置
20min，于 580 nm 测光吸收，记为 A 测定管。
注意：空白管和标准管只需要测定一次。

计算公式：
（（1）按蛋白浓度计算
活性单位定义：37℃每毫克蛋白每分钟催化血红蛋白水解生成 1nmol 酪氨酸为 1 个酶活单位。
胃蛋白酶活性（nmol/min/mg prot）= C 标准品×（A 测定管－A 对照管）÷（A 标准管－A 空
白管）×V1×稀释倍数÷（Cpr×V1）÷T
=550×（A 测定管－A 对照管）÷（A 标准管－A 空白管）÷Cpr
（2）按样本质量计算
活性单位定义：37℃每克组织每分钟催化血红蛋白水解生成 1nmol 酪氨酸为 1 个酶活单位。
胃蛋白酶活性（nmol/min/g 鲜重）= C 标准品×（A 测定管－A 对照管）÷（A 标准管－A 空
白管）×V1×稀释倍数÷（W×V1÷V2）÷T
=550×（A 测定管－A 对照管）÷（A 标准管－A 空白管）÷W
C 标准品：标准品浓度，0.5 μmol/mL 酪氨酸；稀释倍数：（20+100+100）÷20=11；Cpr：
粗酶液蛋白质浓度（mg/mL），需要另外测定；V1：加入反应体系中上清液体积（mL），
20μL=2×10-2
mL；W：组织质量（g）；V2：粗酶液总体积（mL），1mL；T：催化反应时间
（min），10min。
注意事项
试剂三、试剂四、试剂五临用前配制，配制好用不完的试剂 4℃可保存一周。

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