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产地 | 国产 |
品牌 | 谷研 |
货号 | GOY-SH171-B |
用途 | 仅供科研实验 |
英文名称 | |
包装规格 | 50管/48样 |
纯度 | % |
CAS编号 | |
别名 | 淀粉含量测试盒 |
分子式 | |
是否进口 | 否 |
淀粉含量测试盒可见分光光度法
商品属性:
检测方法 |
规格 |
货号 |
可见分光光度法 |
50管/48样 |
GOY-SH171-B |
测定意义:
淀粉是植物中糖的主要储存形式,其含量测定对于评价食品营养价值和调查植物体内糖代谢
都有重要意义。
测定原理:
利用 80%乙醇可以把样品中可溶性糖与淀粉分开,进一步采用酸水解法分解淀粉为葡萄糖,
采用蒽酮比色法测定葡萄糖含量,即可计算淀粉含量。自备仪器和用品:可见分光光度计、水浴锅、可调式移液器、玻璃比色皿、研钵、冰、浓硫酸(不允许快递)和蒸馏水。
试剂组成和配制:
试剂一:液体 50mL×1 瓶,4℃保存;
试剂二:液体 70mL×1 瓶,4℃保存;
试剂三:粉剂×1 瓶,4℃保存;
酶液提取:
1、 建议称取约 0.1g 新鲜样本或取 0.1mL 液体样本于研钵中研碎,加入 1mL 试剂一,充分
匀浆后转移到 EP 管中,80℃水浴提取 30min,3000g,25℃离心 5min,弃上清,留沉淀。
2、 沉淀中加入 0.5mL 蒸馏水,放入 95℃水浴中糊化 15min(盖紧,以防止水分散失)。
3、 冷却后,加入 0.35mL 试剂二,25℃提取 15min,振荡 3-5 次。
4、 加入 0.85mL 蒸馏水,混匀,3000g,25℃离心 10min,取上清液待测。
注意:如样本为淀粉含量较高的干样,为保证充分提取,可适当减小取样量,如称取
0.01g~0.02g 干样,加入 1mL 试剂一,其余提取步骤同上。
测定操作:
1、 分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 620nm,蒸馏水调零。
2、 调节水浴锅至 95 度。
3、工作液的配制:临用前在试剂三中加入 7.5mL 蒸馏水后,缓慢加入 42.5mL 浓硫酸,不
断搅拌,充分溶解,待用;用不完的试剂 4℃保存一周;
4、样本测定:取0.2mL样本和1mL工作液至EP管中,95度水浴10 min(盖紧,防止水分散
失),自然冷却至室温,在620 nm 波长下记录测定吸光度值A。
注意:
1、由于工作液具有强腐蚀性,请谨慎操作。
2、若吸光值大于2,淀粉提取步骤(4)的上清液用提取液稀释后再测定,计算公式中乘以
相应的稀释倍数。
3、提取液的配置:0.35mL 试剂二+1.35mL 水。用多少按照此比例配多少。
4、 检测限为 10μg/g 鲜重或 100ng/mgprot。
计算公式:
标准条件下测定的回归方程为 y = 5.872x - 0.0295;x 为标准品浓度(mg/mL),y 为吸光值。
1、按照蛋白浓度计算
淀粉含量(mg/mg prot)=[(A+0.0295)×V1]÷5.872 ÷(V1×Cpr)=0.17×(A+0.0295) ÷Cpr
2、按样本鲜重计算
淀粉含量(mg/g 鲜重)= [(A+0.0295)×V1] ÷5.872÷(W×V1÷V2) =0.289×(A+0.0295) ÷W
3、 按样本体积计算
淀粉含量(mg/mL)= [(A+0.0295)×V1] ÷5.872÷(V3×V1÷V2) =2.89×(A+0.0295)
V1:加入反应体系中样本体积,0.2mL;V2:加入提取液体积,1.7 mL;Cpr:样本蛋白质
浓度,mg/mL;W:样本质量,g;V3:样本体积,0.1mL
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